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              細胞培養(yǎng)常識

              發(fā)布時間:2012-11-01瀏覽:3396次

                                                                        細胞培養(yǎng)技術(shù)

              1. 冷凍管應(yīng)如何解凍? 
                取出冷凍管后, 須立即放入37 水槽中快速解凍, 輕搖冷凍管使其在分鐘內(nèi)全部融化, 并注意水面不可超過冷凍管蓋沿, 否則易發(fā)生污染情形。另冷凍管由液氮桶中取出解凍時, 必須注意安全, 預(yù)防冷凍管之爆裂。 
              2. 細胞冷凍管解凍培養(yǎng)時, 是否應(yīng)馬上去除DMSO?
                除少數(shù)特別注明對DMSO 敏感之細胞外, 絕大部分細胞株(包括懸浮性細胞), 在解凍之后, 應(yīng)直接放入含有10-15ml新鮮培養(yǎng)基之培養(yǎng)角瓶中, 待隔天再置換新鮮培養(yǎng)基以去除DMSO 即可, 如此可避免大部分解凍后細胞無法生長或貼附之問題。 
              3. 可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基? 
                不能。每一細胞株均有其特定使用且已適應(yīng)之細胞培養(yǎng)基, 若驟然使用和原先提供之培養(yǎng)條件不同之培養(yǎng)基, 細胞大都無法立即適應(yīng), 造成細胞無法存活。 
              4. 可否使用與原先培養(yǎng)條件不同之血清種類?
                不能。血清是細胞培養(yǎng)上一個極為重要的營養(yǎng)來源, 所以血清的種類和品質(zhì)對于細胞的生長會產(chǎn)生極大的影響。來自不同物種的血清, 在一些物質(zhì)或分子的量或內(nèi)容物上都有所不同,血清使用錯誤常會造成細胞無法存活。 
              5. 何謂FBS, FCS, CS, HS ? 
                FBS (fetal bovine serum) FCS (fetal calf serum) 是相同的意思, 兩者都是指胎牛血清, FCS 乃錯誤的使用字眼, 請不要再使用。CS (calf serum) 則是指小牛血清。HS (horseserum) 則是指馬血清。 
              6. 培養(yǎng)細胞時應(yīng)使用5 % 10% CO2?或根本沒有影響? 
                一般培養(yǎng)基中大都使用HCO3-/CO32-/H+ 作為pH 的緩沖系統(tǒng), 而培養(yǎng)基中NaHCO3 的含量將決定細胞培養(yǎng)時應(yīng)使用的CO2 濃度。當培養(yǎng)基中NaHCO3 含量為每公升3.7 g 時,細胞培養(yǎng)時應(yīng)使用10 % CO2;當培養(yǎng)基中NaHCO3 為每公升1.5 g 時, 則應(yīng)使用5 % CO2 培養(yǎng)細胞。 
              7. 何時須更換培養(yǎng)基? 
                視細胞生長密度而定, 或遵照細胞株基本數(shù)據(jù)上之更換時間,按時更換培養(yǎng)基即可。 
              8. 培養(yǎng)基中是否須添加抗生素? 
                  除于特殊篩選系統(tǒng)中外, 一般正常培養(yǎng)狀態(tài)下, 培養(yǎng)基中不應(yīng)添加任何抗生素。 
              9. 附著性細胞繼代時所使用之trypsin-EDTA 濃度?應(yīng)如何處理? 
                一般使用之trypsin-EDTA 濃度為0.05% trypsin-0.53mMEDTA.4 Na。*次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中, 保存于–20 ,避免反復(fù)冷凍解凍造成trypsin 之活性降低, 并可減少污染之機會。 
              10. 懸浮性細胞應(yīng)如何繼代處理?
                一般僅需持續(xù)加入新鮮培養(yǎng)基于原培養(yǎng)角瓶中, 稀釋細胞濃度即可, 若培養(yǎng)液太多時, 可將培養(yǎng)角瓶口端稍微抬高, 直到無法容納為止。分瓶時取出一部份含細胞之培養(yǎng)液至另一新的培養(yǎng)角瓶, 加入新鮮培養(yǎng)基稀釋至適當濃度, 重復(fù)前述步驟即可。 
              11. 欲將一般動物細胞離心下來,其離心速率應(yīng)為多少轉(zhuǎn)速?
                欲回收動物細胞, 其離心速率一般為300xg (1,000rpm),5 - 10 分鐘, 過高之轉(zhuǎn)速, 將造成細胞死亡。 
              12. 細胞之接種密度為何? 
                依照細胞株基本數(shù)據(jù)上之接種密度或稀釋分盤之比例接種即可。細胞數(shù)太少或稀釋的太多亦是造成細胞無法生長之一重要原因。 
              13. 細胞冷凍培養(yǎng)基之成份為何?
                動物細胞冷凍保存時zui常使用的冷凍培養(yǎng)基是含5 - 10 %DMSO (dimethyl sulfoxide) 90 - 95 % 原來細胞生長用之新鮮培養(yǎng)基均勻混合之。注意:由于DMSO 稀釋時會放出大量熱能, 故不可將DMSO 直接加入細胞液中, 必須使用前先行配制完成。 
              14. DMSO 之等級和無菌過濾之方式為何? 
                冷凍保存使用之DMSO 等級, 必須為Tissue culture gradeDMSO (Sigma D2650), 其本身即為無菌狀況, *次開瓶后應(yīng)立即少量分裝于無菌試管中, 保存于4°C, 避免反復(fù)冷凍解凍造成DMSO 之裂解而釋出有害物質(zhì), 并可減少污染之機會。若要過濾DMSO, 則須使用耐DMSO Nylon 材質(zhì)濾膜。
              15. 冷凍保存細胞之方法? 
                冷凍保存方法一冷凍管置于4 30~60 分鐘 (-20 30 分鐘*)  -80 16~18 小時或隔夜)  液氮槽vaporphase 長期儲存。 
                冷凍保存方法二冷凍管置于已設(shè)定程序之可程序降溫機中每分鐘降1-3  至–80  以下, 再放入液氮槽vapor phase長期儲存。*-20 不可超過小時, 以防止冰晶過大,造成細胞大量死亡,亦可跳過此步驟直接放入-80 冰箱中,惟存活率稍微降低一些。 
              16. 細胞欲冷凍保存時, 細胞冷凍管內(nèi)應(yīng)有多少細胞濃度?
                冷凍管內(nèi)細胞數(shù)目一般為1x106 cells/ml vial, 融合瘤細胞則以5x106 cells/ml vial 為宜。 
              17. 應(yīng)如何避免細胞污染? 
                細胞污染的種類可分成細菌、酵母菌、霉菌、病毒和霉?jié){菌。主要的污染原因為無菌操作技術(shù)不當、操作室環(huán)境不佳、污染之血清和污染之細胞等。嚴格之無菌操作技術(shù)、清潔的環(huán)境、與品質(zhì)良好之細胞來源和培養(yǎng)基配制是減低污染之方法。 
              18. 如果細胞發(fā)生微生物污染時,應(yīng)如何處理? 
                加入相應(yīng)抗生素。直接滅菌后丟棄之。 
              19. 支原體(mycoplasma) 污染的細胞, 是否能以肉眼觀察出異狀? 
                不能。除極有經(jīng)驗之專家外,大多數(shù)遭受支原體污染的細胞株,無法以其外觀分辨之。 
              20. 支原體污染會對細胞培養(yǎng)有何影響? 
                支原體污染幾乎可影響所有細胞之生長參數(shù), 代謝及研究之任一數(shù)據(jù)。故進行實驗前,必須確認細胞為mycoplasma-free,實驗結(jié)果之數(shù)據(jù)方有意義。 
              21. CO2 培養(yǎng)箱之水盤如何保持清潔?
                定期至少每兩周一次) 以無菌蒸餾水或無菌去離子水更換之。

               

              來源:慧穎生物實驗室

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